腫瘤代謝全景介紹
前言
一個世紀前,德國生物化學(xué)家Warburg首次描述了腫瘤發(fā)生與代謝失調(diào)之間的聯(lián)系。為了在營養(yǎng)供應(yīng)有限、代謝廢物堆積的腫瘤微環(huán)境(TME)中競爭生長的空間,狡猾的腫瘤細胞會發(fā)生許多代謝適應(yīng)性轉(zhuǎn)變,傾向于產(chǎn)生更多的生物量,從而促進其增殖。其代謝產(chǎn)物不僅作為物質(zhì)能量產(chǎn)生的基礎(chǔ),還能調(diào)節(jié)基因和蛋白質(zhì)的表達,進而與周圍環(huán)境中的細胞產(chǎn)生代謝串擾,影響非轉(zhuǎn)化細胞的行為。隨著腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移,甚至整個機體的營養(yǎng)分布和代謝受到影響。近期發(fā)表在《Cell Metabolism》上的綜述為我們帶來了腫瘤代謝方面的新發(fā)現(xiàn)。
葡萄糖和氨基酸的攝取失調(diào) 葡萄糖 是哺乳動物細胞消耗的主要碳源,在正常細胞中,葡萄糖攝取通過生長因子和位置信號調(diào)節(jié)[1],而腫瘤細胞通常表現(xiàn)出從細胞外環(huán)境吸收葡萄糖的能力增強。一方面,癌癥病人RTK編碼基因如EGF受體 (EGFR) 、erb-b2受體 (ERBB2) 和c-Met的基因組擴增;PI3K及其負調(diào)控因子PTEN和INPP4B的突變使得細胞能自主攝取足量的葡萄糖,從而保持生長和增殖[2]。另一方面,腫瘤細胞獲得侵襲性表型,以維持細胞運動所需的肌動蛋白重塑[3]。反過來,細胞外基質(zhì) (ECM) 成分——透明質(zhì)酸可增加葡萄糖攝取和糖酵解,從而促進ATP產(chǎn)生來促進癌細胞侵襲[4]。此外,降低的細胞密度本身可以提高GLUT1轉(zhuǎn)運蛋白的表達,增加葡萄糖的吸收和利用[5]。
腫瘤細胞向合成代謝轉(zhuǎn)變。第一,糖酵解中間體葡萄糖-6-磷酸可以轉(zhuǎn)移到磷酸戊糖途徑(PPP),用來合成核苷酸。第二,下游的糖酵解中間體也可作為合成代謝前體。比如果糖-6-磷酸,是葡萄糖氨基聚糖合成的基石。第三,3-磷酸甘油酸可通過磷酸甘油酸脫氫酶(PHGDH)催化反應(yīng)合成絲氨酸 (圖1)。
除了葡萄糖,腫瘤細胞也增加對谷氨酰胺的攝取。腫瘤增殖會刺激血漿谷氨酰胺轉(zhuǎn)運體ASCT2/SLC1A5和SN2/SLC38A5的上調(diào),谷氨酰胺也可以在線粒體中被谷氨酰胺酶1 (GLS1)分解,這些轉(zhuǎn)運體和酶都被c-myc正調(diào)控[6]。谷氨酰胺除了參與蛋白質(zhì)合成外,還在細胞中發(fā)揮多種合成代謝作用(圖1)。
圖1:葡萄糖和氨基酸的攝取失調(diào)
利用中心碳代謝和多種方式獲得營養(yǎng)中心碳代謝 (CCM) 包括糖酵解途徑 (EMP) 、磷酸戊糖途徑 (PPP) 以及三羧酸循環(huán) (TCA) 。傳統(tǒng)上,TCA循環(huán)被認為是一個分解代謝過程,由于葡萄糖攝取和丙酮酸生產(chǎn)的增加,產(chǎn)生了部分碳盈余,允許TCA循環(huán)中間產(chǎn)物離開中心碳代謝,參與各種生物合成反應(yīng)。
在參與合成代謝的細胞中,TCA循環(huán)中間產(chǎn)物檸檬酸從線粒體中輸出到細胞質(zhì),合成脂肪酸和膽固醇。脂肪生成是一個高度消耗NADPH的過程。為了滿足NADPH的供應(yīng),草酰乙酸可以轉(zhuǎn)化為蘋果酸重新進入線粒體,或被蘋果酸酶1 (ME1)催化為丙酮酸,產(chǎn)生NADPH。另外,胞質(zhì)中的檸檬酸轉(zhuǎn)化為異檸檬酸,然后通過異檸檬酸脫氫酶(IDH1)轉(zhuǎn)化為α-酮戊二酸,也可以產(chǎn)生NADPH。
另一種用來轉(zhuǎn)移一部分TCA碳免于完全氧化的中間產(chǎn)物是α-酮戊二酸,它可以產(chǎn)生谷氨酸,作為其他幾種非必需氨基酸的前體。另外,產(chǎn)生一個分子的脯氨酸還會消耗ATP、NADH和NADPH,進一步抑制線粒體電子負載[7](圖2)。
圖2:利用中心碳代謝參與生物合成
除了主要的低分子量營養(yǎng)(即葡萄糖和氨基酸),腫瘤細胞還能夠利用廣泛的替代營養(yǎng)源。一是通過“巨胞飲”(macropinocytosis)作用捕獲細胞外蛋白質(zhì)以恢復(fù)氨基酸[8]。二是通過受體介導(dǎo)的內(nèi)吞作用攝取不溶性營養(yǎng)素,如鐵和膽固醇[9]。三是利用死亡、壞死細胞碎片獲取營養(yǎng)[10](圖3)。
圖3:多種方式獲取營養(yǎng)
對電子受體、抗氧化和氮的高需求 增殖中的癌細胞對電子受體的再生有著持續(xù)的高需求,以產(chǎn)生蛋白質(zhì)和核酸生物合成的前體。糖酵解和TCA循環(huán)都需要 NAD+作為電子受體 。腫瘤細胞具有獨特的Warburg效應(yīng)[11],糖酵解活性增強,依賴于乳酸脫氫酶 (LDH) 從NADH中不斷再生NAD+。因此,乳酸分泌是腫瘤細胞的顯著特征[12]。胞質(zhì)電子也能以NADH的形式通過蘋果酸-天冬氨酸穿梭和甘油-磷酸穿梭運送到線粒體,以促進ETC中NAD+的再生 (圖4) 。最近,新鑒定出線粒體NAD+轉(zhuǎn)運體MCART1 (由SLC25A51編碼) ,也可以在胞質(zhì)和線粒體間傳遞NAD+[13,14]。
圖4:腫瘤對電子受體的高需求
上調(diào)的合成代謝加上TME的限制,使腫瘤細胞面臨 更高水平的氧化應(yīng)激壓力 。因此,腫瘤細胞依靠多種抗氧化防御機制,如谷胱甘肽 (GSH) 系統(tǒng)和硫氧還蛋白 (TRX) 系統(tǒng),保護自身免受此類氧化損傷。所以促進這些保護機制的遺傳和代謝改變經(jīng)常在腫瘤中發(fā)現(xiàn)。另外,腫瘤細胞也通過改變其代謝來應(yīng)對氧化應(yīng)激,以維持活性氧 (ROS) 清除分子的抗氧化能力。在臨床前研究中,干預(yù)保護細胞免于鐵死亡的代謝機制已成為一種有前景的治療手段。
還原氮可用于大分子合成或廢物轉(zhuǎn)化,氮需求的增加與腫瘤增殖有著緊密的聯(lián)系。癌細胞優(yōu)先消耗首選生長支持氮供體——如谷氨酰胺,并在耗盡首選氮源后發(fā)展出以下適應(yīng)性的節(jié)氮策略。(A)從頭谷氨酰胺合成;(B)優(yōu)先谷氨酸轉(zhuǎn)氨為a-酮戊二酸,作為增殖細胞中非必需氨基酸合成最大化的策略;(C)從頭谷氨酸合成;(D)在LKB1缺乏腫瘤中偏好CPS1介導(dǎo)的氨甲酰磷酸產(chǎn)生途徑;(E)天冬氨酸用于嘧啶合成增加,與ASS1缺陷腫瘤對精氨酸輸入的依賴性增加相協(xié)同(圖5)。
圖5:腫瘤對氮的高需求
代謝異質(zhì)性、與腫瘤微環(huán)境互作
腫瘤產(chǎn)生于不同的組織和細胞類型,在代謝方面會有明顯的生理差異。當腫瘤細胞離開原組織并定植到其他器官時,它們可能會受到轉(zhuǎn)移器官微環(huán)境的潛在限制。因此,腫瘤的代謝多樣性是細胞固有的因素和遇到的代謝環(huán)境共同決定的。影響腫瘤代謝特征的因素主要有:細胞自身的致癌突變、腫瘤起源組織、定植器官的營養(yǎng)環(huán)境以及特定代謝物的驅(qū)動信號(圖6)。
圖6:腫瘤代謝的異質(zhì)性
腫瘤與微環(huán)境中多種輔助或基質(zhì)細胞,如成纖維細胞、免疫細胞和內(nèi)皮細胞互相作用。腫瘤細胞可以利用信號和代謝影響周圍基質(zhì)細胞的行為,誘導(dǎo)基質(zhì)細胞參與組織修復(fù),從而促進癌細胞的存活和發(fā)展[15]。例如,許多實體瘤由大量的癌癥相關(guān)成纖維細胞(CAF)組成,這些成纖維細胞從局部組織中招募并合成ECM。在某些情況下,組織特異性CAF還可以通過合成或釋放氨基酸的酮酸為腫瘤提供營養(yǎng)支持(圖7)。總之,TME是一個復(fù)雜的代謝系統(tǒng),其中多種活性細胞有助于腫瘤特異性代謝環(huán)境的形成,從而調(diào)節(jié)其細胞行為并促進腫瘤擴展。
圖7:與腫瘤微環(huán)境的代謝相互作用
腫瘤與機體代謝生態(tài) 越來越多的證據(jù)表明,致癌作用受機體代謝調(diào)節(jié)的影響。比如,與肥胖、糖尿病、衰老等相關(guān)的代謝變化在促進腫瘤發(fā)生、侵襲方面起著重要作用[16]。在人群水平上,降低細胞外葡萄糖和胰島素水平的藥物,如二甲雙胍,已被證明可以降低糖尿病患者的癌癥發(fā)病率[17]。
此外,一些腫瘤表現(xiàn)出影響整個機體代謝狀態(tài)的能力。腫瘤主導(dǎo)的全身代謝最突出的表現(xiàn)是惡病質(zhì)[18]。最近發(fā)現(xiàn),腫瘤也可能擾亂肝臟和脂肪組織中代謝基因表達的晝夜節(jié)律,影響生物體的代謝狀態(tài)[19,20] (圖8)。
圖8:腫瘤與機體代謝生態(tài)
總結(jié)
與腫瘤相關(guān)的代謝變化不僅維持腫瘤細胞本身的異常增殖,更迫使TME內(nèi)的基質(zhì)細胞、甚至整個機體的代謝平衡都發(fā)生重塑。共同促進了癌細胞的積聚和擴散,降低了免疫系統(tǒng)抵抗的抵抗能力,并直接升高癌癥相關(guān)的致死率。通過解析腫瘤所依賴的代謝適應(yīng)特征,有助于指導(dǎo)發(fā)現(xiàn)新的治療甚至飲食干預(yù)方法,可能與現(xiàn)有的治療措施(如化療、靶向抑制劑和免疫檢查點阻斷)協(xié)同作用。
引用文獻:
[1] Thompson, C.B. (2011). Rethinking the regulation of cellular metabolism. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 76, 23–29. [2] Lawrence, M.S., Stojanov, P., Mermel, C.H., Robinson, J.T., Garraway, L.A., Golub, T.R., Meyerson, M., Gabriel, S.B., Lander, E.S., and Getz, G. (2014). Discovery and saturation analysis of cancer genes across 21 tumour types. Nature 505, 495–501. [3] Zanotelli, M.R., Rahman-Zaman, A., VanderBurgh, J.A., Taufalele, P.V., Jain, A., Erickson, D., Bordeleau, F., and Reinhart-King, C.A. (2019). Energetic costs regulated by cell mechanics and confinement are predictive of migration path during decision-making. Nat. Commun. 10, 4185. [4] Sullivan, W.J., Mullen, P.J., Schmid, E.W., Flores, A., Momcilovic, M., Sharpley, M.S., Jelinek, D., Whiteley, A.E., Maxwell, M.B., Wilde, B.R., et al. (2018). Extracellular matrix remodeling regulates glucose metabolism through TXNIP destabilization. Cell 175, 117–132.e21. [5] Kondo, H., Ratcliffe, C.D.H., Hooper, S., Ellis, J., MacRae, J.I., Hennequart, M., Dunsby, C.W., Anderson, K.I., and Sahai, E. (2021). Single-cell resolved imaging reveals intra-tumor heterogeneity in glycolysis, transitions between metabolic states, and their regulatory mechanisms. Cell Rep. 34, 108750. [6] Gao, P., Tchernyshyov, I., Chang, T.C., Lee, Y.S., Kita, K., Ochi, T., Zeller, K.I., De Marzo, A.M., Van Eyk, J.E., Mendell, J.T., and Dang, C.V. (2009). c-Myc suppression of miR-23a/b enhances mitochondrial glutaminase expression and glutamine metabolism. Nature 458, 762–765. [7] Schwo¨ rer, S., Berisa, M., Violante, S., Qin, W., Zhu, J., Hendrickson, R.C., Cross, J.R., and Thompson, C.B. (2020). Proline biosynthesis is a vent for TGFb-induced mitochondrial redox stress. EMBO J. 39, e103334. [8] Kamphorst, J.J., Nofal, M., Commisso, C., Hackett, S.R., Lu, W., Grabocka, E., Vander Heiden, M.G., Miller, G., Drebin, J.A., Bar-Sagi, D., et al. (2015). Human pancreatic cancer tumors are nutrient poor and tumor cells actively scavenge extracellular protein. Cancer Res. 75, 544–553. [9] Brown, M.S., and Goldstein, J.L. (1979). Receptor-mediated endocytosis: insights from the lipoprotein receptor system. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 76, 3330–3337. [10] Kim, S.M., Nguyen, T.T., Ravi, A., Kubiniok, P., Finicle, B.T., Jayashankar, V., Malacrida, L., Hou, J., Robertson, J., Gao, D., et al. (2018). PTEN deficiency and AMPK activation promote nutrient scavenging and anabolism in prostate cancer cells. Cancer Discov. 8, 866–883. [11] Warburg, O., Wind, F., and Negelein, E. (1927). The metabolism of tumors in the body. J. Gen. Physiol. 8, 519–530. [12] Vander Heiden, M.G., Cantley, L.C., and Thompson, C.B. (2009). Understanding the Warburg effect: the metabolic requirements of cell proliferation. Science 324, 1029–1033. [13] Kory, N., Uit de Bos, J., van der Rijt, S., Jankovic, N., G€ura, M., Arp, N., Pena, I.A., Prakash, G., Chan, S.H., Kunchok, T., et al. (2020). MCART1/SLC25A51 is required for mitochondrial NAD transport. Sci. Adv. 6, eabe5310. [14] Luongo, T.S., Eller, J.M., Lu, M.J., Niere, M., Raith, F., Perry, C., Bornstein, M.R., Oliphint, P., Wang, L., McReynolds, M.R., et al. (2020). SLC25A51 is a mammalian mitochondrial NAD+ transporter. Nature 588, 174–179. [15] Dvorak, H.F. (1986). Tumors: wounds that do not heal. Similarities between tumor stroma generation and wound healing. N. Engl. J. Med. 315, 1650–1659. [16] Gomes, A.P., Ilter, D., Low, V., Endress, J.E., Ferna′ ndez-Garc?á, J., Rosenzweig, A., Schild, T., Broekaert, D., Ahmed, A., Planque, M., et al. (2020). Age-induced accumulation of methylmalonic acid promotes tumour progression. Nature 585, 283–287. [17] Noto, H., Goto, A., Tsujimoto, T., and Noda, M. (2012). Cancer risk in diabetic patients treated with metformin: a systematic review and meta-analysis. PLoS ONE 7, e33411. [18] Porporato, P.E. (2016). Understanding cachexia as a cancer metabolism syndrome. Oncogenesis 5, e200. [19] Hojo, H., Enya, S., Arai, M., Suzuki, Y., Nojiri, T., Kangawa, K., Koyama, S., and Kawaoka, S. (2017). Remote reprogramming of hepatic circadian transcriptome by breast cancer. Oncotarget 8, 34128–34140. [20] Tsoli, M., Schweiger, M., Vanniasinghe, A.S., Painter, A., Zechner, R., Clarke, S., and Robertson, G. (2014). Depletion of white adipose tissue in cancer cachexia syndrome is associated with inflammatory signaling and disrupted circadian regulation. PLoS ONE 9, e92966. [21] Pavlova NN, Zhu J, Thompson CB. The hallmarks of cancer metabolism: Still emerging. Cell Metab. 2022 Mar 1;34(3):355-377.
作者:楊黎星
編輯人:Transparent
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來源:醫(yī)藥速覽 2022-08-15
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網(wǎng)址: 腫瘤代謝全景介紹 http://m.u1s5d6.cn/newsview840522.html
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